Diplomatura: Bacteriología Clínica

Ciencias de la Salud
Modalidades de cursado:
  • Virtual
  • Duración: 8 meses

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Nuestras Carreras presenciales se dictan en C.A.B.A , San Isidro o Lanús. Para más información podes comunicarte de 9.00 a 21.00 hs. al 0800 222 3340 o enviar el formulario y te contactaremos a la brevedad.

Esta Diplomatura busca elevar el nivel de la microbiología clínica y posicionar al laboratorio en un lugar crítico y estratégico dentro del equipo de salud. En la actualidad, existe una oferta académica limitada sobre este tema, por lo que la propuesta de la Kennedy es de suma importancia para responder a la demanda en la formación microbiológica ya que brinda una formación de excelencia que permite al profesional contar con las herramientas necesarias para interactuar con el personal médico.

Dirección: Dr. Rolando N. Soloaga

La diplomatura tiene como objetivo la optimización en el procesamiento microbiológico, en la interpretación y en el criterio de informe de muestras clínicas clave que incluyen sangre, LCR, muestras osteoarticulares, piel y partes blandas, intraabdominales, orina y catéteres, para permitir al médico la implementación temprana del tratamiento antimicrobiano con el fin de reducir la mortalidad, el tiempo de estadía hospitalaria, los gastos de antibióticos-enfermería-pruebas adicionales así como también la presión de selección de resistencias.

Está demostrado que el retraso en instaurar la terapia adecuada para el foco infeccioso y el agente involucrado se relaciona con un incremento significativo en la mortalidad de los pacientes con sepsis o con meningitis y en la morbilidad de pacientes con infecciones osteoarticulares.

Por otra parte, el informe de contaminantes en todas estas muestras se traduce en tratamientos innecesarios con costos elevados, toxicidad e inclusive selección de cepas resistentes. Para mejorar la calidad del diagnóstico se deben optimizar todas las etapas del proceso (preanalítica, analítica y posanalítica).

  • Modalidad: plataforma virtual de la Universidad Kennedy (8 encuentros asincrónicos). 
  • Destinatarios: graduados/as de las carreras de Microbiología y Bacteriología. Se requiere título universitario completo. 
  • Canal de contacto: cursos@kennedy.edu.ar

Docente del curso: Dr. Rolando Noel Soloaga.

Para más información y consultas sobre inscripciones y aranceles, los/as invitamos a ponerse en contacto por mail con cursos@kennedy.edu.ar

Plan de estudios

1. Introducción
1.1. Definición

2. Origen

3. Clasificación clínica

4. Osteomielitis hematógena

5. Osteomielitis asociada a foco contiguo
5.1. Osteomielitis asociada a foco contiguo sin insuficiencia vascular asociada
5.2. Osteomielitis asociada a foco contiguo con insuficiencia vascular asociada

6. Algunos microorganismos particulares. Observaciones

7. Factores predisponentes

8. Diagnóstico histopatológico

9. Diagnóstico microbiológico
9.1. Muestras.
9.2. Procesamiento

10. Interpretación. Distintas situaciones

11. Prótesis osteoarticulares
11.1. Muestras para estudios microbiológicos
11.2. Procesamiento
11.3. Criterios de interpretación.

12. Estudios por imágenes.

13. Micetomas.
13.1. Definición.
13.2. Origen.
13.3. Epidemiología.
13.4. Etiología.
13.5. Manifestaciones Clínicas
13.6. Factores predisponentes
13.7. Estudios por imágenes
13.8. Diagnóstico
13.8.1.Diagnóstico Histopatológico
13.8.2. Diagnóstico microbiológico

14. Antibióticos a informar en el antibiograma

Bibliografía

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  • Drago L, Clerici P, Morelli I, Ashok J, Benzakour T, Bozhkova S, Alizadeh C, Del Sel H, Sharma HK, Peel T, Mattina R, Romanò CL. The World Association against Infection in Orthopaedics and Trauma (WAIOT) procedures for Microbiological Sampling and Processing for Periprosthetic Joint Infections (PJIs) and other Implant-Related Infections. J Clin Med.;8(7):933. doi: 10.3390/jcm8070933. PMID: 31261744; PMCID: PMC6678965. 2019
  • Esteban J, Gómez-Barrena E. An update about molecular biology techniques to detect orthopaedic implant-related infections. EFORT Open Rev.;6(2):93-100. doi: 10.1302/2058-5241.6.200118. PMID: 33828851; PMCID: PMC8022009. 2021
  • Kim DY, Kim UJ, Yu Y, Kim SE, Kang SJ, Jun KI, Kang CK, Song KH, Choe PG, Kim ES, Kim HB, Jang HC, Jung SI, Oh MD, Park KH, Kim NJ. Microbial Etiology of Pyogenic Vertebral Osteomyelitis According to Patient Characteristics. Open Forum Infect Dis.;7(6):ofaa176. doi: 10.1093/ofid/ofaa176. PMID: 32523973; PMCID: PMC7270706. 2020
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1. Generalidades
1.1. Introducción
1.2. Definición e incidencia
1.3. Clasificación
1.4. Vías de infección
1.5. Agentes etiológicos
1.6. Factores predisponentes
1.7. Presentación clínica
1.8. Localización

2. Diagnóstico
2.1. Citoquímico
2.2. Diagnóstico bacteriológico
2.3. Histopatología
2.4. Otros estudios

3. Interpretación. Distintas situaciones

Bibliografía

  • Kim DY, Kim UJ, Yu Y, Kim SE, Kang SJ, Jun KI, Kang CK, Song KH, Choe PG, Kim ES, Kim HB, Jang HC, Jung SI, Oh MD, Park KH, Kim NJ. Microbial Etiology of Pyogenic Vertebral Osteomyelitis According to Patient Characteristics. Open Forum Infect Dis.;7(6):ofaa176. doi: 10.1093/ofid/ofaa176. PMID: 32523973; PMCID: PMC7270706. 2020
  • Goossens J, Forien M, Jelin G, Palazzo E, Dieudé P, Ottaviani S. Polyarticular septic arthritis caused by Erysipelothrix rhusiopathiae infection. Intern Med J.;52(2):336-338. doi: 10.1111/imj.15686. PMID: 35187831. 2022
  • Goswami K, Parvizi J, Maxwell Courtney P. Current Recommendations for the Diagnosis of Acute and Chronic PJI for Hip and Knee-Cell Counts, Alpha-Defensin, Leukocyte Esterase, Next-generation Sequencing. Curr Rev Musculoskelet Med.;11(3):428-438. doi: 10.1007/s12178-018-9513-0. PMID: 30062484; PMCID: PMC6105482. 2018
  • Esteban J; Salar-Vidal Ll; Schmit B; et al. Multicenter evaluation of the BIOFIRE joint infection panel for the detection of bacteria, yeast, and AMR genes in synovial fluid samples. J Clin Microbiol 2023
  • Donders CM, Spaans AJ, van Wering H, van Bergen CJ. Developments in diagnosis and treatment of paediatric septic arthritis. World J Orthop.;13(2):122-130. doi: 10.5312/wjo.v13.i2.122. PMID: 35317401; PMCID: PMC8891656. 2022

1. Introducción

2. Clasificación
2.1 Primarias- Secundarias
2.2 Superficiales- Profundas
2.3 Origen

  • Ambulatorias
  • Nosocomiales
  • Asociada a cuidados de la salud

2.4 Evolución

  • Agudas
  • Crónicas

2.5 Clínicas: complicadas y no complicadas
2.5.a Infecciones no complicadas

  • Panadizo
  • Impétigo
  • Ectima
  • Erisipela
  • Celulitis
  • Foliculitis
  • Forúnculo
  • Carbunclo (o ántrax)
  • Abscesos cutáneos
  • Ulceras cutáneas
  • Nódulos

2.5.ab. Otras

  • Difteria cutanea
  • Tularemia
  • Anthrax
  • Ulceras y fístulas
  • Actinomicosis
  • Maduromicosis
  • Tuberculosis
  • Focos profundos o crónicos de infección (osteomielitis, piomiositis, intra-abdominal, linfadenitis)
  • Hidradenitis supurada

2.5.b. Infecciones complicadas de piel y partes blandas

  • Necrotizantes
    → celulitis necrotizante no clostridial
    → celulitis necrotizante clostridial
    → fascitis necrotizante tipo 1
    → fascitis necrotizante tipo2
    → miosistis clostridial (gangrena gaseosa)
    → miositis estreptocóccica
    → gangrena de fournier
    → gangrena sinergística
  • No necrotizantes
    → monomicrobianas

3. Casos particulares:
3.1 → Infección de heridas traumáticas
→ Infección de heridas traumáticas de origen ambulatorio:

  • Exposición a medios acuáticos
  • Aguas limpias (arroyos, ríos, lagos,etc)
  • Agua salada
  • Relacionadas a piletas de natación y acuarios
  • Piletas de agua caliente (jacuzzi)
  • Misceláneas

→ Infección de heridas no relacionadas a medios acuáticos
→ Infección de punciones en drogadictos venosos
→ Mordeduras animales o humanas
3.2 Infecciones relacionadas a contacto con animal o sus
productos.

  • Erisipeloide
  • Enfermedad de Lyme

3.3 Otras infecciones de la comunidad

  • Lepra

4. Infecciones nosocomiales
Diagnostico microbiológico de infecciones de heridas quirúrgicas
Clasificación:

  • Heridas limpias
  • Heridas limpias-contaminadas
  • Heridas contaminadas
  • Heridas sucias-contaminadas

5. Infecciones de las úlceras por decubito y pie diabético

6. Infecciones en pacientes quemados. Diagnóstico microbiológico

7. Procesamiento de muestras de piel y partes blandas en general

8. Interpretación. Heridas quirúrgicas

9, Antibióticos a informar

Bibliografía

  • Watkins RR, David MZ. Approach to the Patient with a Skin and Soft Tissue Infection. Infect Dis Clin North Am.;35(1):1-48. doi: 10.1016/j.idc.2020.10.011. PMID: 33494872. 2021
  • Trelease-Bell A. Skin Infections and Outpatient Burn Management: Bacterial Skin Infections. FP Essent.;489:11-15. PMID: 31995349. 2020
  • Stieferman AE, Mazi P, Burnham JP. Severe Skin and Soft-Tissue Infections. Semin Respir Crit Care Med;43(1):3-9. doi: 10.1055/s-0041-1740974. Epub 2022 Feb 16. PMID: 35172354. 2022
  • Spichler Moffarah,A; Mohajer,M; Hurwitz,B; Armstrong,D. Skin and soft tissue infections. ASMscience.org. Microbiology Spectrum Nov 2016
  • Russo A, Trecarichi EM, Torti C. The role of Gram-negative bacteria in skin and soft tissue infections. Curr Opin Infect Dis.;35(2):95-102. doi: 10.1097/QCO.0000000000000807. PMID: 34840273. 2022

1. Introducción
1.1. Factores predisponentes
1.2. Clasificación
1.3. Vías de infección bacteriana
1.4. Patogenia
1.5 Agentes etiológicos acorde a:
1.5.a Grupos etáreos
1.5.b Inmunocompromiso
1.5.c. Otras situaciones
1.6 Signos y síntomas

2. Características de algunos patógenos importantes
2.1. Streptococcus pneumoniae
2.2. N.meningitidis
2.3. H.influenzae
2.4 L.monocytogenes
2.5. S.agalactiae
2.6. Bacilos gram negativos
2.7. Estafilococos
2.8. M.tuberculosis
2.9. Anaerobios
2.10. Etiología polimicrobiana
2.11. Meningitis por espiroquetas
2.12. Meningitis por parásitos
2.13. Meningitis por hongos

3. Diagnóstico de laboratorio
3.1. Procesamiento
3.1.1. Examen directo
3.1.2. Cultivos
3.1.3. Otras metodologías

4. Interpretación

5. Infecciones asociadas al sistema de derivación (shunts)
5.1.a. Infecciones asociadas a sistemas de derivación interna de LCR
5.1.b. Infecciones asociadas a catéteres externos de LCR
5.2. Diagnóstico microbiológico: muestras y procesamiento
5.3. Observaciones e interpretación

6. Meningitis. Aspectos a resaltar

7. Absceso de cerebro

8. Absceso subdural

9. Antibióticos a informar

Bibliografia

  • Donovan J, Thwaites GE, Huynh J. Tuberculous meningitis: where to from here? Curr Opin Infect Dis.;33(3):259-266. doi: 10.1097/QCO.0000000000000648. PMID: 32324614; PMCID: PMC7259381. 2020
  • Albuquerque RC, Moreno ACR, Dos Santos SR, Ragazzi SLB, Martinez MB. Multiplex-PCR for diagnosis of bacterial meningitis. Braz J Microbiol.;50(2):435-443. doi: 10.1007/s42770-019-00055-9. Epub 2019 Feb 22. PMID: 30796713; PMCID: PMC6863191. 2019
  • Anouk M, Oordt-Speets RB, Bhavsar A, Moe H. Kyaw global etiology of bacterial meningitis: a systematic review and meta-analysis. PLoS One;13(6). 2018
  • Cantu RM, M Das J. Viral Meningitis.. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2021 Jan–. PMID: 31424801. 2022.

1. Generalidades

2. Mecanismos defensivos del tracto genitourinario

3. Factores predisponentes de infecciones genitourinarias

4. Factores de virulencia

5. Vías de infección

6. Prevalencia de infecciones urinarias

7. Localización

8. Clasificación

9. Bacteriuria asintomática

10. Infección urinaria recurrente

11. Etiología

12. Infecciones urinarias asociadas a cálculos urinarios

13. Infecciones urinarias en pacientes sondados

14. Diagnóstico microbiológico
14.1 Indicaciones para el urocultivo
14.2 Muestras:

  • Micción limpia o al acecho
  • Primer chorro
  • Sondaje
  • Punción suprapúbica
  • Muestras de talla vesical u ostomías
  • Biopsia renal
  • Citoscopía

14.3 Transporte y conservación de las muestras
14.4 Procesamiento de las distintas muestras
14.4.a Procesamiento de la orina:

  • Sedimento urinario
  • Coloración de Gram
  • Métodos catastrales o de screening
  • Nitritos
  • Esterasa leucocitaria
  • Catalasa
  • Dipslide
  • Cultivo
  • Métodos automatizados
  • Métodos moleculares

14.4.b Interpretación del urocultivo

  • Tipo de microorganismo
  • Factores que afectan los recuentos bacterianos
  • Causas de sedimento normal y cultivos positivos.

14.4.c Análisis de puntos de cortes

  • Sexo masculino
  • Prostatitis bacteriana crónica
  • Sexo femenino
  • Puntos de corte en el paciente sondado.
  • Punción suprapúbica
  • Pacientes pediátricos
  • Candiduria

14.5 Hemocultivos

15. Métodos de localización de la infección
16. Antibióticos a informar
17. Informe.
18. Observaciones finales

Bibliografía

  • Werneburg GT. Catheter-Associated Urinary Tract Infections: Current Challenges and Future Prospects. Res Rep Urol;14:109-133. doi: 10.2147/RRU.S273663. PMID: 35402319; PMCID: PMC8992741. 2022
  • Tullus K, Shaikh N. Urinary tract infections in children. Lancet.;395(10237):1659-1668. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30676-0. PMID: 32446408. 2020
  • Uyar,A; Bkinci,Z; Dundar,D; Baydemar,C. Chilhood urinary tract infection caused by extended-spectrum B-lactamase producing bacteria. Risk factors and empiric therapy. Pediatr Int 59:176-180. 2017
  • Veauthier B, Miller MV. Urinary Tract Infections in Young Children and Infants: Common Questions and Answers. Am Fam Physician.;102(5):278-285. PMID: 32866365. 2020
  • Wagenlehner FME, Bjerklund Johansen TE, Cai T, Koves B, Kranz J, Pilatz A, Tandogdu Z. Epidemiology, definition and treatment of complicated urinary tract infections. Nat Rev Urol.;17(10):586-600. doi: 10.1038/s41585-020-0362-4. Epub 2020 Aug 25. PMID: 32843751. 2020
  • Sabih A, Leslie SW. Complicated Urinary Tract Infections.. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 28613784. 2022

1. Generalidades
1.1 Introducción
1.2 Localizaciones de las infecciones intra-abdominales
1.3 Factores de riesgo para falla de tratamiento
1.4 Etiología y distintas situaciones
1.4.a Absceso intraperitoneales, apendicitis, diverticulitis, colescisititis, colangitis
1.4.b Abscesos hepáticos
1.4.c Abscesos esplénicos
1.4.d Abscesos pancreáticos
1.4. e Abscesos suprarenales
1.4.f Abscesos retrofasciales como los del psoas
1.4.g Infecciones ginecológicas pelvianas

2. Peritonitis
2.1. La peritonitis infecciosa puede clasificarse en:
2.2. Patogenia
2.3. Peritonitis secundaria
2.4. Peritonitis terciaria y en situaciones especiales
2.5. Peritonitis primaria o Peritonitis bacteriana espontánea (PBE)
2.6. Peritonitis en pacientes con diálisis peritoneal

3. Comparación de distintas situaciones. Resumen

4. Estadísticas

Bibliografía

  • Zhang G, Jazwinski Faust A. Spontaneous Bacterial Peritonitis. JAMA.;325(11):1118. doi: 10.1001/jama.2020.10292. PMID: 33724324. 2021
  • Xiong YM, Rao X. Clinical and Microbiological Characteristics of Patients with Complicated Intra-abdominal Infections in Intensive Care Unit. Curr Med Sci.;40(1):104-109. doi: 10.1007/s11596-020-2152-x. Epub 2020 Mar 13. PMID: 32166671. 2020
  • Szeto,Ch; Kam-tap,P; Johnson,D; Bernardini,J; dong,J; Figueriedo,A; ito,Y; Kazancioglu,R; Moraes,T; Esch,S; Brown,E. ISPD Guidlines/Recomendations. ISPD catheter-related infection recomendations: 2017 update. Peritoneal Dyalisi International 37:141-154. 2017
  • Szeto CC, Li PK. Peritoneal Dialysis-Associated Peritonitis. Clin J Am Soc Nephrol.;14(7):1100-1105. doi: 10.2215/CJN.14631218. Epub 2019 May 8. PMID: 31068338; PMCID: PMC6625612. 2019

1. Introducción y Definiciones

  • SIRS
  • Sepsis
  • Sepsis severa
  • Disfunción de órganos
  • Shock séptico
  • Bacteriemia/Fungemia
  • Episodio de bacteriemia
  • Contaminación
  • Muestra de hemocultivo
  • Set de hemocultivos
  • Serie de hemocultivos
  • Retrocultivo
  • Subcultivo a ciegas

2. Clasificación de bacteriemias acorde a:
2.1. Duración
2.2. Lugar de adquisición
2.3. Número de tipos de microorganismos hallados
2.4. Respuesta al tratamiento
2.5. Documentación del foco infeccioso

3. Incidencia y origen de sepsis, bacteriemia y fungemia

4. Factores predisponentes

5. Endocarditis infecciosa
5.1. Introducción
5.2. Fisiopatogenia
5.3. Factores de riesgo
5.4. Localización
5.5. Criterios diagnósticos
5.5.a Criterios de Duke
5.5.b Diagnóstico de Endocarditis infecciosa causada por microorganismos infrecuentes
5.6. Agentes etiológicos
5.7. Situaciones especiales
5.7.a. Drogadictos endovenosos
5.7.b. Endocarditis infecciosa relacionada a dispositivos cardiovasculares
5.7.c. Endocarditis protésica

6.Variables metodológicas
6.1. ¿Cuándo realizar hemocultivos?
6.2. ¿En qué tipo de infecciones?
6.3. Obtención de hemocultivos.

  • Momento de la toma de muestra
  • Antisepsia de la piel y desinfección del tapón del frasco
  • Cambio de agujas
  • Sitio de la toma de muestra
  • Volumen de sangre
  • Número de muestras
  • Utilización de frasco anaeróbico
  • Utilización de frascos con resina o con carbón activado

6.4. Criterios de rechazo
6.5. Transporte y conservación de las muestras

7. Sistemas de hemocultivos
7.1 Sistemas manuales

  • Convencional
  • Bifásico
  • Lisis centrifugación
  • Comparación de métodos

7.2 Sistemas automatizados

8. Variables metodológicas inherentes al procesamiento de los hemocultivos
8.1. Subcultivos iniciales
8.2. Subcultivos terminales
8.3. Tiempo de incubación
8.4. Hemocultivos positivos sin desarrollo en los subcultivos, causas
8.5. El dilema de la incubación prolongada de los frascos inicialmente positivos
8.6. Situaciones particulares
8.6.a Legionella spp
8.6.b Mycoplasma y Ureaplasma
8.6.c Anaerobios estrictos
8.6.d Micobacterias
8.6.e Campylobacter y Helicobacter
8.6. Brucella
8.6.g Bartonella spp
8.6.h Leptospira spp
8.6.i Hongos

9. Criterios de jerarquización de los hemocultivos

  • Tipo de microorganismo
  • Número de hemocultivos positivos
  • Tiempo de positivización de los frascos
  • Recuento de colonias
  • Aislamiento en otras muestras

10. Antibiograma e identificación directamentos desde los frascos de hemocultivos

11. Informe de los hemocultivos

12. Estadísticas

13. Otras perspectivas para reducir el tiempo de diagnóstico e informe

14. Hemocultivos cuantitativos

15. Antibióticos a informar

16. Rol de los biomarcadores en el manejo del paciente séptico

Bibliografía

  • Wenzler,E ; Timbrook, T; Wong, J;Hurst, J; MacVane, S. Implementation and optimization of molecular rapid diagnostic tests for bloodstream infections. Am J Health-Syst Pharm.; 75:e526-37. 2018
  • Wong AYW, Johnsson ATA, Özenci V. Performance of dRAST on Prospective Clinical Blood Culture Samples in a Simulated Clinical Setting and on Multidrug-Resistant Bacteria. Microbiol Spectr.;10(2):e0210721. doi: 10.1128/spectrum.02107-21. Epub 2022 Mar 2. PMID: 35234503; PMCID: PMC8941874. 2022
  • Smith DA, Nehring SM. Bacteremia.. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 28723008. 2022
  • Pliakos,E; Andreatos,N; Shehadeh,F; Ziakas,P; Mylonakisa,E. The Cost-Effectiveness of Rapid Diagnostic Testing for the Diagnosis of Bloodstream Infections with or without Antimicrobial Stewardship. Clin Microbiol Rev e00095-17. 2018.
  • McMullen,A; Wilen,C; Burnham, CA. Epidemiology of bloodstream infections. En The Dark Art of The Blood Cultures. ASM Press pag 163-181. 2018

1. Introducción
1.1. Tipos de catéteres
1.2. Etiología
1.3. Patogénesis de las infecciones asociadas a catéteres.
1.4. Definiciones de distintas infecciones relacionadas a catéteres
1.5. Complicaciones

2. Diagnóstico microbiológico
2.1. Catéteres removibles
2.1.a . Técnica semicuantitativa de Maki
2.1.b .Técnicas cuantitativas
2.1.c. Otras técnicas
2.1.d . Comparación de métodos
2.2. Catéteres no removibles.
2.2.a. Cultivo cuantitativo diferencial de sangre
2.2.b. Tiempo diferencial
2.2.c. Cepillado endoluminal
2.2.d. Hisopado de piel pericatéter
2.3. Procesamiento de líquidos de infusión
2.4. Conservación de catéteres

3. Tiempo de positivización de los hemocultivos en BAC

4. Algunos puntos sobresalientes de las últimas Guías del IDSA

5. Síntesis de criterios de jerarquización.

6. Infecciones relacionadas a otros dispositivos médicos
6.1. Infecciones asociadas a marcapasos
6.2. Infecciones asociadas a prótesis o parches (graft) vasculares
6.3. Infecciones asociadas a dispositivos de diálisis/Otros
6.4. Infecciones asociadas a dispositivos intrauterinos (DIU)
6.5. Infecciones asociadas a implantes dentales

Bibliografía:

  • Pérez-Granda MJ, Carrillo CS, Rabadán PM, Valerio M, Olmedo M, Muñoz P, Bouza E. Increase in the frequency of catheter-related bloodstream infections during the COVID-19 pandemic: a plea for control. J Hosp Infect.;119:149-154. 2022
  • Patel PR, Weiner-Lastinger LM, Dudeck MA, et al. Impact of COVID-19 pandemic on central-line–associated bloodstream infections during the early months of 2020, National Healthcare Safety Network. Infect Control Hosp Epidemiol. doi: 10.1017/ice.2021.108. 2021
  • Miller,M; Binnicker,M; Campbell,S; Carroll,K; Chapin,K; et.al. A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases: 2018 Update by the Infectious Diseases Society of America and the American Society for Microbiology. Clin Infect Dis 67:1-94. 2018

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